| 检测病原 | 检测方法 | 检测样品 |
| 口蹄疫（FMD） | RT-PCR | 水泡液、淋巴结、脊髓 、水泡皮 |
| 猪瘟（CSF/HC） | RT-PCR | 淋巴结、脾脏、肾脏、扁桃体 |
| 猪繁殖与呼吸综合征（PRRS） | RT-PCR | 支气管、肺脏、全血 |
| 猪圆环病毒2型（PCV2） | PCR | 淋巴结、肺脏 |
| 猪伪狂犬（PR） | PCR | 流产胎儿、脑组织、肺脏 |
| 细小病毒病（PP） | PCR | 产胎儿、胎盘、阴道分泌物 |
| 日本乙型脑炎（JE） | RT-PCR | 血液、脑脊髓液 |
| 猪流感（SI） | RT-PCR | 肺、气管及分泌物、鼻腔拭子 |
| 流行性腹泻（PED） | RT-PCR | 小肠及其内容物 |
| 传染性胃肠炎（TGE） | RT-PCR | 小肠和胃及其内容物 |
| 轮状病毒（RV） | RT-PCR | 小肠及其内容物 |
| 塞尼卡病毒A | PCR | 水泡皮 |
表2 猪细菌性疾病检测项表
| 病原名称 | 检测项目 | 检测方法 | 检测样品 |
| 猪链球菌（S.S） | 链球菌细菌分离 | 平板法、染色镜检、PCR鉴定 | 肺脏（带气管）肝、关节液、脓汁、血液 |
| 副猪嗜血杆菌病（H.Ps） | 副猪嗜血杆菌病 | 平板法、染色镜检、PCR鉴定 | 肺脏（带气管）、关节积液、胸腹腔渗出液 |
| 猪萎缩性鼻炎（Bm） | 波士杆菌 | 平板法、染色镜检、PCR鉴定 | 鼻腔后部和气管分泌物、肺 |
| 猪肺疫(Pm） | 多杀性巴氏杆菌 | 平板法、染色镜检、PCR鉴定 | 肺脏（带气管）、淋巴结 |
| 仔猪黄痢、白痢、水肿病（E.coli） | 致病性大肠杆菌 | 平板法、生化试验 | 肝脏、肠内容物 |
| 猪喘气病（M.Hy） | 肺炎支原体 | 试管法、PCR鉴定 | 肺脏、气管 |
| 猪沙门氏菌（SM） | 沙门氏菌 | 平板法、染色镜检、PCR鉴定 | 肺脏（带气管）、肝脏、肠内容物 |
| 猪传染性胸膜肺炎（APP） | 胸膜肺炎放线杆菌 | 试管法、染色镜检、PCR鉴定 | 肺脏、气管、胸腔渗出液 |
1.2 病料采集要保持无菌操作
采集病料，应全程无菌操作。特别是，微生物检查、血清学检查涉及的样本。采集前后要对采集设备进行反复清洗，采集结束后要进行清洁消毒，遵守无菌操作的规程，以免因为杀菌不彻底导致的检疫结果出现误差。无菌采集的样品，使用的器械、容器等等，严格消毒处理，严格遵守相应的无菌操作流程。
1.3 料采集要遵守适时性
采集病料前要初步制定计划，把握得当。尤其夏季，采集不能超过4h。时间过长的，可能会导致病料组织腐烂生长出杂菌，难以诊断出疫病引发的病原。必要时，应急宰早期发病的活体组织，自其身上获取病料组织。血液样品在采
集前一般禁食8h。
1.4 安全采集病料
采集样本过程中，应注意操作的安全性，同时做好人身防护，严防人畜共患病感染;应防止污染环境，防止疫病传播，扩大感染面积，做好环境消毒和病害肉尸的处理。
病料及检测样品的保存及送检
采样人员的安全防护近年来，致人发病乃至死亡的人兽共患病的事件在世界各地常常发生，我国也是人兽共患病的多发区。兽医工作人员接触患病动物频繁，是人兽共患病的高危人群，因此，更应替惕人兽共患病对兽医工作人员的感染。工作人员在采集病料时更应该提高生物安全防护意识，工作时戴口罩、穿工作服(防护服)、戴手套，接触患畜或其粪便等污染物后要勤洗手和消毒，保持良好的工作习惯，同时保持工作环境中空气流通。
完善送检样品信息 为了能真实的反应客观的情况，及时准确的追根溯源，必须要保证采样样品信息真实、详细、准确。 采样单的填写包括：受检单位名称、地址、联系方式；畜禽种类、性别、年龄、免疫状况（免疫时间、疫苗类型、生产批号、生产厂家等)；所采集样品名称、数量、保存状态、标号；填写需要检测的项目，同时还需详细记录被采样动物的临床症状、剖检变化、排泄物状态以及用药情况等；采样人和被采样人均应签字，最后记录采样日期。
综上所述，按照正确的病料采集和送检要求不仅可以提高疫病诊断的速度，还能有效的提高疫病检查的准确性。因此，在动物疫病评估中，不仅要遵守病料样品采集的基本原则，还要按照相关要求及顺序对病料进行处理，同时要根据检疫现场与患病动物的实际情况，采用最佳的方法对患病动物进行疫病的检查，确保检疫结果的准确性和真实性。
来源：执业兽医
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